The Giant Protein Titin

A 6-15% közötti akrilamidtartalmú standard fehérje géleket általában a 10 és 200 kD közötti fehérjesávok kimutatására használják. Mivel ez a módszer kizárja a nagyobb fehérjék kimutatását, a kutatók csak két évtizeddel ezelőtt fedeztek fel egy új, rendkívül alacsony látszólagos mobilitású óriásfehérjét a nem hagyományos 2%-os gélek alkalmazásával. Ennek az új fehérjének, a titin1 (más néven connectin2 ) molekulatömegét korábban 1,2 és 3,0 MD közöttire becsülték (áttekintésért lásd a 3. és 4. hivatkozást). Ha a titin sávok intenzitását az SDS-géleken összehasonlítjuk más myofibrilláris fehérjékével, úgy tűnik, hogy a titin a miozin és az aktin után a harmadik leggyakoribb izomfehérje, amely az összesített izomfehérje-tartalom ≈10%-át teszi ki. Egy 80 kg testsúlyú felnőtt ember tehát körülbelül fél kilogramm titint tartalmazhat. Tekintettel bőségére, a titin késői felfedezése meglehetősen meglepő.

Az 1980-as években titin-specifikus antitestekkel végzett elektronmikroszkópos vizsgálatok kimutatták, hogy a titin a myofibrillum szerves része. Kimutatták, hogy az egyes titinmolekulák a Z-korongtól az M-vonalig terjednek, így a vastag (főleg miozin) és a vékony (főleg aktin) filamentumok mellett egy harmadik szarkomerikus filamentumrendszert alkotnak.5 Ennek megfelelően az elektronmikroszkópiával láthatóvá tett tisztított natív titinmolekulák >1 μm hosszúnak bizonyultak.6 Továbbá ezek a molekulák gyöngyös alszerkezetű rúdként jelentek meg,6 mivel peptidláncaik főként Ig-szerű és FN3-szerű ismétlődésekből állnak,7 amelyek globuláris doménbe hajtódnak, és a titin tömegének közel 90%-át teszik ki (1. ábra). Az A-sávban ezek az ismétlődések rendkívül rendezett mintázatokba rendeződnek, és segítenek a vastagszálas szerkezet megszervezésében azáltal, hogy szabályos távolságban lévő kötőhelyeket biztosítanak más A-sávos fehérjéknek, nevezetesen a könnyű meromiozinnak és a C-proteinnek (áttekintésért lásd a 15. hivatkozást). A vastagszálas fehérjékkel való szoros társulás miatt a titin A-sávos része fiziológiás körülmények között funkcionálisan merev. Ezzel szemben a titin I-sávos szakasza rugalmas.517 Amikor a titin filamentumokat kivonják a szarkomerből, vagy sugárzás vagy proteázok által lebontják, a relaxált myofibrillum merevsége csökken (áttekintésért lásd a 3. és 4. hivatkozást). Újabban kimutatták, hogy a titin viseli a nyugalmi feszültség nagy részét a fiziológiás nyúlások során, mind a váz-, mind a szívizomban.1819

A titin izomszerkezetben és rugalmasságban betöltött szerepének vizsgálatára szolgáló molekuláris szintű megközelítések egyszerűbbé váltak, miután meghatározták a humán váz- és szívtitinek cDNS-szekvenciáját.8 Amint azt korábban a váz- és szívtitinek SDS-géleken mutatott eltérő mozgékonysága2021 már sejtette, ma már egyértelmű, hogy a titin különböző izoformákban fejeződik ki a különböző izomszövetekben.8 A humán szívtitint például egy óriási, 82 kb-os mRNS kódolja, amely egy 81 kb-os nyitott olvasókeretet tartalmaz, amely egy 27 000-residue peptidet (Mr, 2993 kD) kódol. Ezzel szemben a humán soleus titin lényegesen nagyobb polipeptid, molekulatömege ≈3700 kD. Ezek a különbségek a különböző izomszövetekben az I-sávú titin alternatív splicing eseménysorozatának eredményei.8

A titin rugalmassága

A laza harántcsíkolt izomrostok nyújtásakor visszahúzó erő keletkezik, amit passzív vagy nyugalmi feszültségnek (merevségnek) nevezünk. Régóta ismert, hogy a szívizom sokkal merevebb, mint a vázizom. Korábban úgy gondolták, hogy a szívizomszövet nagy passzív merevsége főként az extracelluláris struktúrák, például a kollagén alacsony megfelelőségéből ered,22 de az egysejtes szívizomsejt preparátum23 megjelenésével világossá vált, hogy a merev struktúráknak legalább részben a sejten belül kell elhelyezkedniük.2425 A merev extracelluláris elemek, amelyek segítenek megakadályozni az izomszövet túlnyújtását, csak szélsőségesebb feszültségek esetén találhatók meg. A közelmúltban azt is sikerült kimutatni, hogy a relaxált, egyes, izolált myofibrillumok nyújtásakor jelentős passzív erő alakul ki, és a szívminták körülbelül egy nagyságrenddel merevebbek, mint a csontvázpreparátumok.19 Ezek a merevségi különbségek ma már ismertek, és a titin különböző hosszúságú változatainak izomtípus-specifikus expressziójából, pontosabban az I sávban lévő két különböző titin motívumcsalád eltérő expressziójából erednek (1. ábra).813 Az egyik motívumtípust a tandemszerűen elrendezett Ig-domének képviselik. A legmerevebb gerinces harántcsíkolt izom, a szív 40 tandem-Ig-domént expresszál, míg a sokkal hajlékonyabb soleus-izom 93 tandem-Ig-domént. A másik differenciálisan expresszálódó I-sávos titin szegmens egy külön motívumtípus, amelyet PEVK-doménnek nevezünk, mivel szekvenciájának ≈70%-át prolin-, glutamát-, valin- és lizin-maradékok alkotják.8 Ez a PEVK-domén szintén a szívben a legrövidebb, a vázizomban pedig sokkal hosszabb: az emberi szív PEVK-régiója 163 maradékot tartalmaz, míg az emberi soleus PEVK-régiója ≈2200 maradékot (1. ábra).8

A titin PEVK- és tandem-Ig-régiójának eltérő expressziójának felfedezése szükségessé tette e két különböző I-sávos szegmens relatív hozzájárulásának meghatározását a myofibrillum rugalmasságához. Az ilyen azonosításra nemrégiben kísérletet tettek a kiválasztott I-sávos titin antitest-epitópok helyzetének nyomon követésével a megnyújtott egyes myofibrillumokban13 vagy izomrostokban,14 a minták passzív feszültségválaszának mérése mellett (2. ábra; vö. 13. hivatkozással). Azt feltételezték, hogy laza szarkomer hossznál az I-sávos titin domének kompakt állapotban vannak, míg kis nyújtás a tandem-Ig régiók kiegyenesedését idézheti elő.13142728 Ez a kezdeti megnyúlás csak kis (szívizom) vagy akár elhanyagolható (vázizom) passzív feszültségnövekedéssel korrelál202125 , és így nem feltétlenül a tandem-Ig modulok kibontakozása idézi elő, amelyekről kimutatták, hogy egymástól függetlenül termodinamikailag stabil doménné hajtódnak össze.9 Mérsékelt és hosszú nyúlásoknál úgy tűnik, hogy a fő nyúlás a PEVK-régióban történik, legalábbis a vázizomzat myofibrillumaiban1314 , miközben a passzív feszültség folyamatosan növekszik (2. ábra). A szívizomzat myofibrillumaiban a rövid PEVK régió8 is támogathatja a passzív feszültséget, de csak korlátozott mértékben (vö. a 2. ábra legendájával). Miután a PEVK szegmens nyújthatósága kimerült, a passzív feszültséget elsősorban az Ig-domének2728 kibontakozása határozhatja meg; mivel azonban a szívszarkomerek maximális hossza in vivo nem haladja meg a ≈2,4 μm-t, ilyen kibontakozás fiziológiás körülmények között valószínűleg nem történik.13

Összefoglalva, a PEVK régió nagyfokú nyújthatósága fiziológiás mennyiségű nyújtás1314 során arra utal, hogy ez a domén képes kibontakozni egy hosszú polipeptidlánccá. Ezért a titin PEVK régiója és a tandem-Ig domének egy sorozatban működő két rugós rendszert alkothatnak. A két rugó szövetspecifikus kifejeződése a különböző hosszváltozatokban most már magyarázatot adhat arra, hogy a harántcsíkolt izmok passzív mechanikai tulajdonságai miért olyan változatosak. A különböző tandem-Ig szegmensek különböző hosszúságú expressziója a különböző izomtípusokban fontos lehet a fiziológiás laza szarkomerhossz beállításában, míg a PEVK-dús szekvenciák eltérő splicingje szabályozhatja a relaxált izomszövet jellegzetes merevségét. Fontos feladat most annak feltárása, hogy a titin PEVK-régiója milyen tercier struktúra segítségével mehet keresztül azokon a masszív és gyorsan reverzibilis konformációs változásokon, amelyek alapvetően meghatározzák a myofibrilláris passzív feszültséget és rugalmasságot.

A titin kialakuló szerepe az izomsejtek biológiájában

Most nem ismert, hogy milyen sejtes jelátviteli gépezetek irányíthatják az óriás titin-polipeptid transzlációját, összeszerelését, valamint szétszerelését és turnoverét a miogenezis és a növekedés során. A titin több száz kötőhelyet tartalmaz a miozin, a C-protein és az M-vonal fehérjék715 számára, valamint valószínűleg egy jelentős számú, még nem azonosított Z-korong és I-sávú fehérje számára. Hogyan szabályozza tehát az izomsejt a 27 000-33 000-residue titin peptid transzlációját, és hogyan lehet a titin szintézise szorosan összekapcsolva a titin ligandumok összeszerelésével a miogenezis során? Egy vonzó modell az lenne, hogy a titin, a miozin és a C-fehérje mRNS-ek kolokalizálódnak és kotranszlációsan összeállnak,29 ezáltal a naszcens peptidláncokat az in vivo talált parakristályos rendben lévő fehérjehálózatba kényszerítik. Nyilvánvaló, hogy annak jobb megértéséhez, hogy a titin/vastagszálas szupramolekuláris összeszerelés hogyan képes magas rendezettségű háromdimenziós hálót alkotni, most az expresszált titin, miozin és C-fehérje fragmentumok biokémiai jellemzéséből és talán a titin mRNS-metabolizmusának vizsgálatából kell kiindulni.

A titin filamentum összeszerelésének szabályozását szolgáló másik mechanizmusra utalhat a titin szekvencia néhány jellegzetes tulajdonsága: a PEVK régió és az Ig és FN3 szerkezeti ismétlődések 244-297 példánya mellett (izomtípustól függően) a titin 19 egyedi szekvencia inszerciót is tartalmaz, amelyek együttesen ≈300 kD-t, vagyis a titin tömegének 8-10%-át teszik ki.8 Az N-terminális és C-terminális titin régiókban található két egyedi szekvencia inszerció tandemszerűen elrendezett SP motívumokat kódol (1. ábra). Az SP ismétlődések szerin-maradványai in vitro izomkivonatokkal foszforilálhatók,3031 és ez magyarázhatja, hogy a titin in vivo miért válik gyorsan jelöltté, amikor foszfátot injektálnak állatokba.32 Lehetséges, hogy eddig még nem azonosított foszforilációs/defoszforilációs útvonalak így szabályozzák a titin filamentumok összeállását. A jövőben érdekes lenne megvizsgálni a titin Z-korong és M-vonal végi foszforilációjának funkcionális következményeit.

A titin egyik egyedi szekvencia-beillesztése, amely a C-terminus közelében található, egy szerin/ treonin kináz domént kódol (1. ábra).7 Ez a domén és a flankáló Ig és FN3 ismétlődések szerveződése nagyon hasonlít a gerinctelen óriásfehérjék, a twitchin és a projectin szerveződéséhez.3334 Mind a twitchin, mind a titin kinázdomainjában kalmodulin-kötőhelyeket mutattak ki.3536 Nemrégiben kimutatták, hogy az Aplysia puhatestűből származó twitchin kináz több nagyságrenddel aktiválódik a mindenütt jelenlévő kalcium-szabályozott S100 kofaktoron keresztül.37 Ezért valószínűnek tűnik, hogy a twitchin- és talán a titin-filamentumok egy új kalcium-érzékeny filamentumrendszert képviselnek az izomban. Annak ellenére, hogy egyre több ismeretünk van a titin/twitchin kinázok aktivitását mesterséges szubsztrátokon szabályozó tényezőkről, e kinázok valódi szubsztrátja (és így fiziológiai szerepük) továbbra sem ismert.

A titin összeszerelés/lebontás fiziológiájának jobb megértéséhez molekuláris szinten fontos lépés lehet a kalpain proteáz, a p94,16 számára a titinen található specifikus kötőhelyek felfedezése (vö. 1. ábra). A minden sejttípusban kifejeződő ubiquitárius kalpainokkal ellentétben a p94 csak az izomszövetekben fejeződik ki. A p94-et csaliként használva egy élesztő two-hybrid screenben két különböző p94-kötőhelyet azonosítottak a titin filamentumon.16 Az első hely az I-sávos titin központi régiójában található. Lehetséges, hogy a titinnek ezen a helyen a p94 vagy a p94 által szabályozott proteázok általi hasítása magyarázhatja, hogy a titin miért bomlik le könnyen az úgynevezett T2 titinné (vagy béta-konnektinné).3 Ezután a T2 a titin fiziológiás bomlásterméke lehet, amely részt vesz a myofibrilláris turnoverben. Továbbá a titin második kötőhelye a p94 számára a filamentum C-terminális végén található, ami egybeesik a titin utolsó egyedi szekvencia-beillesztésével (1. ábra). Bár nem világos, hogy miért van legalább két különböző kötőhely a p94 számára a titinben, az egyik lehetőség az, hogy – mivel az oldható p94 rendkívül gyorsan lebomlik és felezési ideje 30 perc – a titinben lévő p94-kötőhelyek a kalpain-proteáz komplex stabilizált állapotba történő szekvenálását szolgálják. Érdekes módon a titin C-terminális p94-kötő motívuma egyes izomszövetekben a differenciális splicing révén kimarad,38 ami a p94 és a titin közötti kölcsönhatások további komplexitását növeli, és felveti a titin stabilitásának szövetspecifikus szabályozásának lehetőségét.

Patofiziológiai szempontok

Végezetül a titin filamentum és a p94 vagy más kalpain proteázok közötti kölcsönhatások molekuláris megértése az izomdegeneráció és regeneráció alaposabb megértésével jutalmazhat bennünket, különös tekintettel a patofiziológiai helyzetre. A normális és dystrophiás betegekből származó izombiopsziákban jelen lévő fehérjék gondos felmérése kimutatta a titin degradációját DMD-ben és FCMD-ben.39 Nemrégiben az izomspecifikus p94 kalpain proteáz mutációit találták az LGMD-2A okozójának40 . Mivel a titin specifikus kötőhelyeket biztosít a p94 számára,16 felmerül az az érdekes lehetőség, hogy a genetikailag különböző izomdisztrófiák, mint az FCMD, DMD és LGMD-2A, a p94-titin kölcsönhatás diszregulációjában osztoznak, ami aztán a titin filamentumrendszer kóros törékenységéhez vezet, mint közös, másodlagos betegségmechanizmus.

Összefoglalva, a titin filamentumok fontos szerepet játszanak mind az izom fiziológiás, mind a patofiziológiai működésében. Míg az A-sávban lévő szabályos titinszerkezet kritikusnak tűnik a szarkomer rendezett felépítéséhez, egyértelmű, hogy az I-sávban lévő titin rugalmassága határozza meg a myofibrillum passzív mechanikai tulajdonságait. A jövőben az I sávú titin rugalmas tulajdonságainak jobb molekuláris megértése a biofizikai és a molekuláris biológiai technikák kombinált megközelítéséből fejlődhet ki. Ami a titin potenciális kinázaktivitását és a jelátvitelben betöltött várható szerepét illeti, még várunk a részletesebb feltárásra. Végül, a titin patofiziológiai folyamatokban való részvételének további feltárásához szükséges lesz az expresszált titinmodulok vizsgálata más myofibrilláris és citoszolikus fehérjékkel való lehetséges kölcsönhatások szempontjából, ezáltal e kölcsönhatások molekuláris szintű funkcionális jellemzése.

Kiválasztott rövidítések és rövidítések

.típusú veleszületett izomdisztrófia

.

DMD = Duchenne izomdisztrófia
FCMD = Fukuyama-
FN3 = fibronectin type 3
Ig = immunoglobulin
LGMD-2A = végtagövi izomdisztrófia 2A típus
SP = szerin/prolin dipeptid

1. ábra. A titin filamentum doménarchitektúrája és szarkomerikus elrendezése. A humán soleus titin doménszerkezete, ahogyan azt a 100 kbyte-os mRNS alapján előre jelezték, látható. A 3,7-MD soleus titin peptid 297 példányban tartalmaz 100-residue ismétlődéseket, amelyek az Ig és FN3 szupercsaládok tagjai.8 E domének mindegyike egy 10-12 kDa kis globuláris alegységbe hajtódik, ahogyan azt szerkezeti vizsgálatok kimutatták.9 Az immunelektron-mikroszkópia epitóp-karakterizált titin-specifikus antitestekkel lehetővé teszi, hogy megbecsüljük, a szekvencia mely szegmensei kódolják a Z-korong, I-sáv, A-sáv és M-line101112 titint. A titin I-sávos szegmensére specifikusak a tandemszerűen ismétlődő Ig-domének (tandem-Ig titin) és a prolin-, glutamát-, valin- és lizinmaradékokban gazdag “PEVK-domén” sorai. A titin tandem-Ig és a PEVK régiója a titin filamentum azon részeit képviseli, amelyek fiziológiás mértékű nyújtás során kinyúlnak.1314 Az A-sávos titinre jellemzőek az Ig és FN3 domének szabályos mintázatai, amelyeket “szuper ismétlődéseknek” neveznek.7 Ezek a szuper ismétlődések többszörös és szerkezetileg rendezett kötőhelyeket biztosítanak a miozin és a C fehérje számára.715 A titin Ig/FN3 ismétlődéseken és a PEVK régióján kívül a titin tömegének 8-10%-át egyedi szekvencia-beillesztések alkotják. A kódolt peptidek között foszforilációs motívumok (Pi) és egy szerin/treonin kináz is található. A feltérképezett kalpain p94 kötőhelyek16 láthatóak. A doménmintázat feletti nyilak jelzik azokat a helyeket, ahol izomtípus-specifikus alternatív splicing történik.8

2. ábra. A titin nyúlásának jelenlegi modellje a szarkomer nyújtásával. A fél szarkomer nagy része látható, beleértve az I-sávos részt, amely a rugalmas titin szegmenst rejti. A titin elrendezésének ez a modellje tükrözi a psoas izomban kialakult helyzetet (Linke és munkatársai13 1996-ból adaptálva), és figyelembe veszi a MIR epitópnak az A-sáv legvégén lévő, nemrégiben bejelentett helyzetét is.11 A betoldás az egyes psoas myofibrillumok13 tipikus passzív hossz-nyújtás görbéjét mutatja, az A-tól D-ig terjedő betűk a fő ábrán ábrázolt szarkomerhosszokra utalnak. Úgy gondoljuk, hogy laza hossznál az I sáv titin domének kompakt állapotban vannak (A). Kis nyújtás során a tandem-Ig domének kiegyenesednek, de a PEVK régió csak kis mértékben nyúlik ki, ami nagyon alacsony passzív feszültséget eredményez (B). Mérsékelt nyújtás esetén az Ig-domének alig nyúlnak tovább, míg a PEVK régió kibontakozik, ami a passzív feszültség folyamatos növekedését eredményezi (C). A rendkívül megnyúlt szarkomereknél (a fiziológiás szarkomerhossz-tartomány felső határa felé) a PEVK elem maximálisan kibomlik, és az Ig domének erősen megfeszülnek; a passzív feszültség most eléri a maximumot, mielőtt a korábban kötött A-sávú titin felszabadul az I-sávba (strain limit).20 Rá kell mutatni, hogy ez a psoas titin megnyúlására javasolt modell nem biztos, hogy megfelelően kezeli a szívizom helyzetét, ahol a rövid PEVK szegmens8 hozzájárulása az I-sávú titin nyúlékonyságához nagyon kicsi.13 A szív szarkomerekben a passzív feszültség jelentős passzív növekedése röviddel a laza hossz felett jelenik meg, és úgy tűnik, hogy korrelál a tandem-Ig régió megnyúlásával.2526 A titin rugalmasságának pontos mechanizmusa még tisztázásra vár. A színkódok a következők: kék, aktin; zöld, miozin; sárga, a titin PEVK régiója; és piros, nem PEVK domének. A kitöltött körök az I-sávos tandem-Ig modulokat jelölik. A T12, N2-A, MIR és BD6 a titin antitestek ismert kötőhelyei, amelyeket az I-sávú titin nyúlási tulajdonságainak mérésére használtak egyes izolált myofibrillumokban13. A 9D10? jelzi a 9D10 antitest lehetséges epitóp pozícióját; a C-ben és D-ben a nyílkettősök azt jelzik, hogy az epitóp hosszabb szarkomerhosszúságoknál kiszélesedik.

A tanulmányt a Deutsche Forschungsgemeinschaft (La 668/2-3, Li 690/2-1), az EU és a “Forschungsfond der Fakulta¨t fu¨r Klinische Medizin Mannheim” támogatta. Köszönjük J.C. Ru¨eggnek a folyamatos támogatást.

Footnotes

Correspondence to Siegfried Labeit, European Molecular Biology Laboratory, Meyerhofstrasse 1, D-69012 Heidelberg, Germany.
  • 1 Wang K, McClure J, Tu A. Titin: major myofibrillar components of striated muscle. Proc Natl Acad Sci U S A.1979; 76:3698-3702.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 2 Maruyama K, Matsubara S, Natori R, Nonomura Y, Kimura S, Ohashi K, Murakami F, Handa S, Eguchi G. Connectin, an elastic protein of muscle: characterization and function. J Biochem..1977; 82:317-337.MedlineGoogle Scholar
  • 3 Maruyama K. Connectin, an elastic protein of striated muscle. Biophys Chem..1994; 50:73-85.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 4 Wang K. Titin/konnektin és nebulin: az izom szerkezetének és működésének óriásfehérje uralkodói. Adv Biophys..1996; 33:123-134.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 5 Fu¨rst DO, Osborn M, Nave R, Weber K. The organization of titin filaments in the half-sarcomere revealed by monoclonal antibodies in immunoelectron microscopy: a map of ten nonrepetitive epitopes starting at the Z-line extend close to the M-line. J Cell Biol.1988; 106:1563-1572.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 6 Nave R, Fu¨rst DO, Weber K. Visualization of the polarity of isolated titin molecules: a single globular head on a long thin rod as the M band anchoring domain? J Cell Biol..1989; 109:2177-2187.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 7 Labeit S, Gautel M, Lakey A, Trinick J. Towards a molecular understanding of titin. EMBO J..1992; 11:1711-1716.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 8 Labeit S, Kolmerer B. Titinek, az izom ultrastruktúrájáért és rugalmasságáért felelős óriásfehérjék. Science..1995; 270:293-296.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 9 Politou AS, Gautel M, Improta S, Vangelista L, Pastore A. The elastic I-band region of titin is assembled in a ‘modular’ fashion by weakly interacting Ig-like domains. J Mol Biol.1996; 255:604-616.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 10 Yajima H, Ohtsuka H, Kawamura Y, Kume H, Murayama T, Abe H, Kimura S, Maruyama K. A 11.5 kb 5′-terminális cDNS-szekvencia a csirkemell izom connectin/titin Z-vonal kötő régiójáról. Biochem Biophys Res Commun.1996; 223:160-164.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 11 Bennett PM, Gautel M. Titin domain patterns correlate with the axial disposition of myosin at the end of the thick filament. J Mol Biol..1996; 259:896-903.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 12 Obermann WMJ, Gautel M, Steiner F, Vanderven PFM, Weber K, Furst DO. A szarkomerikus M sáv szerkezete: a myomesin, az M fehérje és a titin 250 kD karboxi-terminális régiójának meghatározott doménjeinek lokalizációja immunelektronmikroszkópiával. J Cell Biol..1996; 134:1441-1453.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 13 Linke WA, Ivemeyer M, Olivieri N, Kolmerer B, Ru¨egg JC, Labeit S. Towards a molecular understanding of the elasticity of titin. J Mol Biol.1996; 261:62-71.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 14 Gautel M, Goulding, D. A titin/konnektin rugalmasságának molekuláris térképe két különböző, egymás után ható mechanizmust tár fel. FEBS Lett..1996; 385:11-14.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 15 Trinick J. Titin and nebulin: protein rulers in muscle? Trends Biochem Sci..1994; 19:405-409.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 16 Sorimachi H, Kinbara K, Kimura S, Takahashi M, Ishiura S, Sasagawa N, Sorimachi N, Shimada H, Tagawa K, Maruyama K, Suzuki K. Az izomspecifikus kalpain, p94, amely felelős a 2A típusú végtagi izomdisztrófiáért, az IS2-n, egy p94-specifikus szekvencián keresztül társul a konnektinnel. J Biol Chem..1995; 270:31158-31162.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 17 Itoh Y, Suzuki T, Kimura S, Ohashi K, Higuchi H, Sawada H, Shimizu T, Shibata M, Maruyama K. Extensible and less-extensible domains of connectin filaments in stretched vertebrate skeletal muscle as detected by immunofluorescence and immunoelectron microscopy using monoclonal antibodies. J Biochem..1988; 104:504-508.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 18 Granzier HLM, Wang K. Passive tension and stiffness of vertebrate skeletal and insect flight muscles: contribution of weak cross-bridges and elastic filaments. Biophys J..1993; 65:2141-2159.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 19 Linke WA, Popov VI, Pollack GH. Passzív és aktív feszültség egyes szívizom-miofibrillumokban. Biophys J..1994; 67:782-792.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 20 Wang K, McCarter R, Wright J, Beverly J, Ramirez-Mitchell R. Regulation of skeletal muscle stiffness and elasticity by titin isoforms: a test of the segmental extension model of resting tension. Proc Natl Acad Sci U S A.1991; 88:7101-7105.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 21 Horowits R. Passive force generation and titin isoforms in mammalian skeletal muscle. Biophys J..1992; 61:392-398.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 22 Brady AJ. Aktív állapot a szívizomban. Physiol Rev..1968; 48:570-600.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 23 Fabiato A, Fabiato F. Dependence of calcium release, tension generation and restoring forces on sarcomere length in skinned cardiac cells. Eur J Cardiol..1976; 4:13-27.MedlineGoogle Scholar
  • 24 Brady AJ. Izolált szívizomsejtek mechanikai tulajdonságai. Physiol Rev..1991; 71:413-428.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 25 Granzier HL, Irving TC. Passzív feszültség a szívizomban: a kollagén, a titin, a mikrotubulusok és a köztes filamentumok hozzájárulása. Biophys J..1995; 68:1027-1044.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 26 Helmes M, Trombitas K, Granzier H. Titin develops restoring force in rat cardiac myocytes. Circ. Res..1996; 79:619-626.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 27 Trombitas K, Jin J-P, Granzier H. The mechanically active domain of titin in cardiac muscle. Circ Res..1995; 77:856-861.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 28 Erickson HP. A fibronektin III-as típusú és immunglobulin domének reverzibilis kibontakozása biztosítja a titin és a fibronektin nyújtásának és rugalmasságának szerkezeti alapját. Proc Natl Acad Sci U S A..1994; 91:10114-10118.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 29 Fulton AB, L’Ecuyer TL. Néhány citoszkeletális fehérje kotranszlációs összeszerelése: következmények és kilátások. J Cell Sci..1993; 105:867-871.MedlineGoogle Scholar
  • 30 Gautel M, Leonard K, Labeit S. Phosphorylation of KSP motifs in the C-terminal region of titin in differentiating myoblasts. EMBO J.1993; 12:3827-3834.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 31 Sebestyen MG, Wolff JA, Greaser ML. A nyúl szívtitin Z-vonal régiójából származó 5,4 kb cDNS fragmentum jellemzése foszforilációs helyeket mutat fel prolin-irányított kinázok számára. J Cell Sci.1995; 108:3029-3037.MedlineGoogle Scholar
  • 32 Sommerville LL, Wang K. In vivo phosphorylation of titin and nebulin in béka skeletal muscle. Biochem Biophys Res Commun.1987; 147:986-992.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 33 Benian GM, Kiff JE, Neckelmann N, Moerman DG, Waterston RH. Egy szokatlanul nagy fehérje szekvenciája, amely szerepet játszik a miozin aktivitás szabályozásában C. elegansban. Nature.1989; 342:45-50.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 34 Ayme-Southgate A, Southgate R, Saide J, Benian GM, Pardue ML. A projektin (a drosophila bent locus terméke) szinkron és aszinkron izom izoformái egyaránt tartalmaznak funkcionális kináz doméneket. J Cell Biol..1995; 128:393-403.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 35 Heierhorst J, Probst WC, Vilim FS, Buku A, Weiss KR. A puhatestű twitchin autofoszforilációja és kinázdoménjének kölcsönhatása kalcium/kalmodulinnal. J Biol Chem..1994; 269:21086-21093.MedlineGoogle Scholar
  • 36 Gautel M, Castiglione Morelli MA, Pfuhl M, Motta A, Pastore A. A calmodulin-binding sequence in the C-terminus of human cardiac titin kinase. Eur J Biochem..1995; 230:752-759.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 37 Heierhorst J, Kobe B, Feil S, Parker MW, Benian GM, Weiss KR, Kemp BE. Az óriás protein kinázok Ca2+/S100 szabályozása. Nature.1996; 380:636-639.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 38 Kolmerer B, Olivieri N, Witt C, Herrmann BG, Labeit S. Az M-vonalú titin genomiális szerveződése és szövetspecifikus kifejeződése két különböző izoformában. J Mol Biol..1996; 256:556-563.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 39 Matsumura K, Shimizu T, Sunada Y, Mannen T, Nonaka I, Kimura S, Maruyama K. Degradation of connectin (titin) in Fukuyama type congenital muscular dystrophy: immunochemical study with monoclonal antibodies. J Neurol Sci..1990; 98:155.CrossrefMedlineGoogle Scholar
  • 40 Richard I, Broux O, Allamand V, Fougerousse F, Chiannilkulchai N, Bourg N, Brenguier L, Devaud C, Pasturaud P, Roudaut C, Hillaire D, Passos-Bueno MR, Zatz M, Tischfield JA, Fardeau M, Jackson CE, Cohen D, Beckmann JS. A calpain 3 proteolitikus enzim mutációi okozzák a limb-girdle muscular dystrophy 2A-t. Cell.1995; 81:27-40.CrossrefMedlineGoogle Scholar

.

Vélemény, hozzászólás?

Az e-mail-címet nem tesszük közzé.